Objetivo |
Desenvolver e demonstrar sensores porosos ultrassensíveis capazes de detetar, em tempo real, microrganismos nocivos em ambientes aquáticos, contribuindo para a monitorização precoce de riscos para a qualidade da água e para a proteção dos sistemas de abastecimento e da aquacultura.
Duração do projeto |
janeiro 2026-junho 2027
Tipo de projeto |
Internacional
Instituição Financiadora |
European Research Council (ERC) – Proof of Concept (PoC), projeto GREEN €2.3M(ERC Starting Grant).
Responsável |
Paulo Roberto Ferreira da Rocha (CFE – UC), Investigador Principal
Equipa |
Marlisa Martinho de Brito (CFE – UC), Investigadora de Pós doutoramento
Instituições participantes no Projeto |
Faculdade de Ciências e Tecnologias, Universidade de Coimbra – Departamento de Ciências da Vida (FCTUC – DCV)
Custo total elegível (EUR) |
150.000 €
Área científica |
Ciências Naturais → Ciências Biológicas → Microbiologia → Bacteriologia
Engenharia e Tecnologia → Engenharia Eletrónica e engenharia Elétrica → Sensores
Ciências Agrárias → Agricultura, Floresta e Pesca → Pesca
O PROTEGE é um projeto financiado pelo European Research Council (ERC) através de uma bolsa Proof of Concept, que tem como objetivo transformar resultados científicos previamente desenvolvidos no projeto ERC GREEN numa solução tecnológica com potencial de aplicação comercial.
O projeto responde ao desafio crescente da contaminação microbiológica em ambientes aquáticos, que afeta tanto os sistemas de abastecimento de água como a aquacultura. A proliferação de cianobactérias nocivas em reservatórios e a presença de bactérias patogénicas em sistemas de produção aquícola geram impactos ambientais, económicos e de saúde pública significativos.
Para enfrentar este problema, o PROTEGE desenvolve sensores baseados em espumas condutoras porosas de poliuretano, capazes de efetuar deteção eletrofisiológica ultrassensível de microrganismos. Esta tecnologia explora uma elevada área de superfície eletroquímica, permitindo alcançar níveis de sensibilidade superiores aos dos métodos convencionais de monitorização da qualidade da água.
O principal objetivo é demonstrar protótipos funcionais em ambientes reais, incluindo reservatórios de abastecimento de água e instalações de aquacultura, fornecendo informação em tempo real e sistemas de telemetria que permitam uma resposta rápida a eventos de contaminação. Em paralelo, o projeto irá desenvolver uma estratégia de valorização e transferência de tecnologia orientada para a futura comercialização da solução.
Tecnologias atuais e oportunidade de inovação
A monitorização microbiológica da qualidade da água continua a depender de metodologias que apresentam importantes limitações para a deteção precoce de eventos biológicos. Embora as tecnologias atualmente disponíveis sejam essenciais para a vigilância ambiental e o diagnóstico laboratorial, a maioria mede parâmetros físico-químicos ou biomarcadores indiretos, requer processamento laboratorial especializado ou não fornece informação em tempo real sobre o estado fisiológico e a atividade dos microrganismos.
O ERC PoC PROTEGE propõe uma abordagem complementar baseada em sensores bioeletrónicos que exploram interfaces eletroquímicas de elevada área superficial para detectar diretamente alterações associadas à atividade microbiana. Esta estratégia pretende permitir uma monitorização contínua, sensível e em tempo real, criando novas capacidades para sistemas de alerta precoce em reservatórios de água e instalações de aquacultura.
A tabela seguinte resume as principais tecnologias atualmente utilizadas, as suas vantagens e limitações, bem como os desafios que o PROTEGE pretende complementar e superar.
| Tecnologia / abordagem | O que é medido | Desempenho atual e principais vantagens | Limitações fundamentais para sistemas de alerta precoce em aquacultura | Refs |
| Sondas multiparamétricas convencionais (oxigénio dissolvido, temperatura, pH, salinidade, condutividade elétrica, turbidez, clorofila, potencial redox) | Parâmetros físico-químicos e indicadores ambientais | Monitorização contínua; tecnologia madura e robusta; amplamente utilizada; adequada para implementação autónoma e monitorização multi-local | Não avaliam diretamente os microrganismos nem o seu estado fisiológico; alterações ambientais podem surgir apenas após mudanças na comunidade microbiana; não distinguem transições biológicas benignas de processos patogénicos | [1–3] |
| Fluorómetros in situ de clorofila, ficocianina e ficoeritrina | Fluorescência de pigmentos como indicador da biomassa de algas ou de cianobactérias | Funcionamento contínuo ou de elevada frequência; tecnologia comercial; útil na vigilância de florações | Aplicável apenas a microrganismos pigmentados; a relação fluorescência/biomassa depende da espécie, morfologia e condições ambientais; influenciada por turbidez, temperatura, histórico de iluminação e interferência de outras algas; Não deteta bactérias patogénicas, incluindo membros da família Vibrionaceae. | [4–7] |
| Cultura microbiológica e contagem de colónias | Microrganismos viáveis cultiváveis | Método de referência; baixo custo de consumíveis; permite isolamento e caracterização fenotípica | Dependente da amostragem e do operador; requer normalmente vários dias; apenas deteta a fração cultivável; inadequado para monitorização contínua; os resultados podem ser obtidos apenas após o estabelecimento da doença | [8–10] |
| qPCR e PCR digital (dPCR) | Sequências específicas de ácidos nucleicos | Elevada sensibilidade analítica e elevada especificidade taxonómica; amplamente utilizada para confirmação de agentes patogénicos conhecidos | Requer alvos previamente definidos, recolha e preparação de amostras e infraestrutura especializada; fornece apenas uma fotografia temporal; a deteção de DNA não implica atividade fisiológica nem risco ecológico iminente | [11–14] |
| Sequenciação metagenómica, de amplicões e metatranscriptómica | Composição das comunidades microbianas e, em alguns casos, expressão génica funcional | Elevada resolução taxonómica e informação ecológica detalhada; extremamente útil para descoberta de novos organismos e caracterização retrospetiva dos ecossistemas | Elevado custo, grande volume de dados e necessidade de processamento laboratorial; não permite monitorização em tempo real; a abundância relativa nem sempre reflete risco fisiológico imediato | [15–17] |
| Microscopia, citometria de fluxo e sistemas automáticos de imagem | Abundância celular, morfologia, fluorescência e características das partículas | Análise rápida após recolha da amostra; deteção relativamente abrangente; diferenciação de populações celulares | Requer manipulação da amostra, sistemas óticos e fluidos complexos e manutenção frequente; desempenho afetado por partículas em suspensão; difícil implementação autónoma prolongada em jaulas offshore; mede sobretudo abundância e não função fisiológica | [18–21] |
| Biossensores eletroquímicos baseados em afinidade (anticorpos, aptâmeros, sondas de DNA ou polímeros molecularmente impressos) | Ligação específica a organismos, antigénios ou sequências de DNA | Elevada especificidade; potencialmente rápidos e sensíveis; área de investigação muito ativa | Geralmente limitados a um ou poucos alvos; degradação dos recetores, biofouling e efeitos da matriz; requer conhecimento prévio do alvo; maioria dos estudos permanece ao nível laboratorial | [22–24] |
| Espectroscopia de impedância eletroquímica (EIS) e sensores bioeletrónicos | Alterações de impedância induzidas pela adesão, crescimento ou interação microbiana com a interface do elétrodo | Tecnologia label-free; elevada sensibilidade; compatível com miniaturização; técnica promissora para deteção microbiana | Frequentemente baseada em elétrodos planares, pequenos volumes e medições pontuais; muitas plataformas requerem recetores funcionalizados; reduzida área ativa e escassa validação em operação contínua de longa duração | [25–30] |
| Biossensores baseados em células de combustível microbianas (MFC) | Alterações na corrente elétrica produzida por comunidades microbianas eletroativas | Funcionamento autónomo; úteis para monitorização de carga orgânica e toxicidade; reconhecimento biológico contínuo | O sinal depende principalmente do metabolismo de biofilmes eletroativos selecionados; estabilização lenta; baixa especificidade para agentes patogénicos; não monitoriza diretamente a microbiota indígena da aquacultura | [31–33] |
| Sistemas de deteção remota, satélites e vigilância por câmaras | Cor superficial da água, temperatura, clorofila e padrões espaciais de florações | Cobertura de grandes áreas; excelente para monitorização regional | Informação limitada sobre a coluna de água; afetada por nuvens, ótica da água e resolução espacial; apenas deteta manifestações macroscópicas tardias; inadequada para vigilância bacteriana em tanques ou jaulas | [34–37] |
| LAMP e diagnósticos moleculares baseados em CRISPR | Sequências específicas de ácidos nucleicos | Muito rápidos, altamente sensíveis e específicos; potencial crescente para utilização portátil | Requerem recolha e preparação de amostras; limitados a alvos genéticos conhecidos; medições descontínuas; a presença de DNA/RNA não indica necessariamente viabilidade ou atividade fisiológica; inadequados para monitorização contínua | [38–40] |
| Monitorização baseada em DNA ambiental (eDNA) | DNA libertado pelos organismos para o meio aquático | Elevada sensibilidade; permite detetar organismos raros ou de difícil cultivo; útil para estudos de biodiversidade e vigilância de agentes patogénicos | Necessita de amostragem e processamento laboratorial; medições pontuais; persistência do DNA pode refletir organismos já ausentes; não distingue células viáveis, metabolicamente ativas ou patogénicas | [41–43] |
| Biossensores microfluídicos do tipo lab-on-a-chip | Células, ácidos nucleicos, proteínas e outros biomarcadores | Miniaturização; reduzido consumo de amostra; integração de múltiplas etapas analíticas; elevado potencial para diagnóstico rápido e portátil | Necessitam de recolha de amostras, manipulação de fluidos e consumíveis; suscetíveis a obstrução e “biofouling”; a maioria dos dispositivos continua dependente de medições descontínuas | [44–46] |
| Inteligência Artificial (IA) aplicada a sensores ambientais convencionais | Padrões e correlações entre parâmetros físico-químicos, meteorológicos e produtivos | Melhora a capacidade de previsão utilizando sensores já instalados; implementação escalável por software | O desempenho depende da qualidade e do conteúdo biológico dos dados de entrada; o risco microbiológico é inferido apenas indiretamente; pode falhar quando os parâmetros ambientais permanecem aparentemente normais | [47–49] |
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Estudo de Mercado
Como parte da estratégia de valorização e transferência de tecnologia do PROTEGE, foi realizado um estudo de mercado para analisar o estado da arte tecnológica, identificar necessidades dos utilizadores finais, avaliar o panorama competitivo e explorar oportunidades de adoção da tecnologia nos setores da monitorização ambiental e da aquacultura.
